Teresa Lopes da Silva, Daniela Feijão et Alberto Reis
La cytométrie de flux multiparamètres a été utilisée pour surveiller la réponse au stress de R. glutinis pendant une fermentation en discontinu, via la viabilité cellulaire, la teneur en lipides et la diffusion intrinsèque de la lumière. Pendant la fermentation de la levure, la proportion de cellules à membrane perméabilisée (cellules mortes) a augmenté lorsque les nutriments et/ou l'oxygène sont devenus limitants. Les cellules de levure ont montré un niveau de lésion plus élevé lorsqu'elles étaient cultivées dans des conditions de limitation par d'autres nutriments que dans des conditions de limitation par l'oxygène, car les cellules mortes ont réduit leur contenu interne et leur taille dans la première situation, ce qui suggère une lyse cellulaire drastique.
La teneur maximale en lipides des levures était de 8 % (p/p) à t = 38,3 h. Cette faible teneur en lipides a été attribuée à une limitation en oxygène, ce qui souligne l'importance du taux de transfert d'oxygène lors de la production de lipides à partir de cultures de levures aérobies.
Des changements dans les signaux lumineux de diffusion vers l'avant et vers le côté ont été détectés pendant la croissance de la levure, ce qui peut fournir un moyen utile et rapide d'identifier la phase de croissance de la levure.
L'approche multiparamétrique décrite ici représente un meilleur système de contrôle basé au niveau de la cellule individuelle qui peut être utilisé pour l'optimisation des performances des bioprocédés de levure, et peut également être utilisé pour le criblage rapide des souches de levure pour la production d'huile à cellule unique.